Grupos de investigación

Grupos de investigación

Mejora y biotecnología de cultivos | AGR-237 | IFAPA



Código: AGR-237
Miembros: Coinciden con los datos existentes en el Servicio de Información Científica de Andalucía (SICA).

Responsable: ANA MARÍA TORRES ROMERO

Teléfono: 957016178
Fax: : 957016043

Email: anam.torres.romero@juntadeandalucia.es
Web:

Organismo: IFAPA
Departamento: IFAPA
Dirección Postal: IFAPA, Centro Alameda del Obispo de Córdoba
Avda. Menéndez Pidal s/n; Apdo. 3092; 14080 Córdoba

Líneas de Investigación:
– Mejora Asistida por Marcadores moleculares (MAS) y Mejora genética tradicional en leguminosas (habas y garbanzos) para: Resistencia a enfermedades (especialmente jopo, ascoquitosis y roya en habas y rabia, fusarium y roya en garbanzo) Calidad nutritiva (ausencia de factores antinutritivos: taninos y vicinaconvicina en habas y componentes de calidad en garbanzo) Estudios de variabilidad genética en distintas especies Estudios transcriptómicos y funcionales. Identificación y análisis de genes expresados en respuesta a distintos estreses bióticos en leguminosas.
– Uso de la poliploidia en la mejora del espárrago
– Puesta a punto de estrategias de selección asistida por marcadores moleculares para resistencia a enfermedades en programas de mejora de trigo duro y harinero.

Proyectos y convenios investigación y agroalimentación:
Título del proyecto: Exploiting genetic variability of resistance genes in major european food legumes to improve varieties for sustainable agriculture (LEGRESIST; Proyecto ERA-NET Plant Genomics)
MEC. Programa Nacional de Biotecnología – Acción Estratégica de Genómica y Proteómica
Duración, 2007-2010
Resp: Ana M. Torres Romero (grupo IFAPA
Coordinador del proyecto. Peter Winter (empresa GenXPro GMBH).
Título del proyecto: Herramientas moleculares y estudios genéticos para la identificación varietal y la mejora de la rosa (Rosa sp.) INIA (RTA2007-00031-00-00)
Duración, 2007-2010
Resp: Ana M. Torres Romero
Título del proyecto: Utilización de variedades primitivas en la ampliación de la base genética de Vicia faba L. mediante el uso de métodos clásicos y moleculares (AGL2008-02305)CICYT
Duración, 2008-2011
Resp: Carmen M. Ávila Gómez
Titulo del proyecto: Aplicación de la genómica estructural, funcional y comparativa para la sostenibilidad y eficiencia del cultivo de leguminosas (habas y garbanzos). INIA (Proyecto RTA2010-00059)
Duración, 2010-2013
Resp: Ana M. Torres Romero
Título del proyecto: Conservación y caracterización de una colección de garbanzo (CICEr arietinum L.). (RF2007-00002-00-00) Entidad financiadora: MEC
Entidades participantes: IFAPA y UCO
Duración, 2008-2010
Resp: Josefa Rubio Moreno
Título del proyecto: Desarrollo y uso de Herramientas biotecnológicas en la Mejora de Leguminosas grano (RTA2007-00030-00-00)INIA
Entidades participantes: IFAPA, UCO y CSIC
Duración, 2008-2010
Resp: Josefa Rubio Moreno
Título del proyecto: Aplicación de herramientas clásicas, moleculares y genómicas para la mejora de la adaptabilidad del trigo al ambiente a partir de especies silvestres (P09-AGR-93)Junta de Andalucía
Entidades participantes: IFAPA,CSIC
Duración, 2010-2013
Resp: Sergio G. Atienza Peñas 

10 Publicaciones más relevantes:
– Díaz R, Torres AM, Satovic Z, Gutierrez MV, Cubero JI, Román B (2010). Validation of QTLs for Orobanche crenata resistance in faba bean (Vicia faba L.) across environments and generations. Theor Appl Genet 120: 909-919

– Fondevilla S, Fernández-Aparicio M, Satovic Z, Emeran AA, Torres AM, Moreno MT, Rubiales D (2010) Identification of quantitative trait loci for specific mechanisms of resistance to Orobanche crenata Forsk. in pea (Pisum sativum L.). Mol Breeding 25: 259-272

– Zorrilla-Fontanesi Y; Cabeza A, Torres AM, Botella MA, Valpuesta V, Monfort A, Sánchez-Sevilla JF, Amaya I (2010) Development and bin mapping of strawberry genic-SSRs in diploid Fragaria and their transferability across the Rosoideae subfamily. Mol Breeding (doi: 10.1007/s11032-010-9417-1)

– Barilli E, Satovic Z, Rubiales D, Torres AM (2010) Mapping of quantitative trait loci controlling partial resistance against rust incited by Uromyces pisi (Pers.) Wint. in a Pisum fulvum L. intraspecific cross. Euphytica doi: 10.1007/s10681-010-0141-z

– Torres AM (2010) Application of Molecular Markers for Breeding Disease Resistant Varieties in Crop Plants. In: S.M. Jain and D.S. Brar (eds.), Molecular Techniques in Crop Improvement, doi 10.1007/978-90-481-2967-6_8, pp.185-205.

– Cobos MJ, Winter P, Kharrat M, Cubero JI, Gil J, Millán T, Rubio J (2009) Genetic analysis of agronomic traits in a wide cross of chickpea. Field Crops Research 111: 130-136

– Palomino C, Fernández-Romero MD, Rubio J, Torres A, Moreno MT, Millán T. (2009) Integration of new CAPS and dCAPS-RGA into a composite chickpea genetic map and their association with disease resistance. Theor Appl Genet 118: 671-682

– Castro P, Pistón F, Madrid E, Millán T, Gil J, Rubio J (2010) Development of chickpea near-isogenic lines for fusarium wilt. Theor Appl Genet 121:1519-1526

– Halila I, Rubio J, Millán T, Gil J, Kharrat M, Marrakchi M (2010) Resistance in chickpea (Cicer arietinum) to Fusarium wilt race ‘0’. Plant Breeding 129: 563-566.

– Gutierrez N, Giménez MJ, Palomino C, Avila CM (in press-online first). Assessment of candidate reference genes for expression studies in Vicia faba L. by real-time quantitative PCR. Molecular Breeding: DOI 10.1007/s11032-010-9456-7

Master y Doctorado:
Véase apartado 4 (Colaboración con otros dptos)

Equipos y técnicas instrumentales avanzadas de las que dispone el grupo:
Oferta científica

– Protocolos de extracción de ADN y ARN en distintas especies herbáceas y leñosas.
– Protocolos para la Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR), electroforesis en geles de agarosa y acrilamida, análisis de fragmentos.
– Se manejan distintos tipos de marcadores (RAPDs, AFLPs, SSRs, CAPs, dCAPs, SNPs, ESTs, etc.) y se han puesto a punto las condiciones para la amplificación y desarrollo para cada uno de ellos.
– Clonación y secuenciación de productos de amplificación.
– Estudios de expresión génica mediante PCR a tiempo real.

Para ello, el equipo dispone del siguiente equipamiento:

– Cabinas de flujo laminar y de extracción de gases
– Termocicladores clásicos, de gradiente y PCR Cuantitativa en Tiempo Real
– Espectrofotómetro para la cuantificación de ADN y ARN
– Cubetas de electroforesis y fuentes de alimentación
– Incubador orbital
– Sistema de captura de imágenes

Líneas Estratégicas:

Líneas temáticas:
– Mejora, Producción y Protección Vegetal



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